Magen und Darm

Helicobacter pylori Atemtest

Prinzip des Tests

Der Helicobacter pylori Atemtest ist ein nicht invasives und sensitives Verfahren zur Diagnostik und Therapiekontrolle. Unter standardisierten Bedingungen wird eine bestimmte Menge Harnstoff, die durch ein bestimmtes Kohlenstoff-Isotop markiert ist, verabreicht  Das ¹³C-Isotop ist nicht radioaktiv und völlig ungefährlich. Wenn Helicobacter-Bakterien im Magen angesiedelt sind, zersetzen sie den markierten Harnstoff in Ammoniak und markiertes Kohlenstoffdioxid. Dieses gelangt über das Blut in die Lunge und wird abgeatmet. Die Ausatemluft wird daraufhin untersucht ob markierte Kohlenstoff-Atome zu finden sind.

Indikation

• Erstuntersuchung auf eine Helicobacter-Infektion v.a. bei Jüngeren Patienten und erst relativ kurzfristig bestehender klinischer Symptomatik
• Erfolgskontrolle nach Eradikationsbehandlung gemäß S2k-Leitlinie

Kontraindikationen

Keine.

Durchführung

Der Atemtest sollte nüchtern durchgeführt werden, d. h. die Patienten sollen mindestens 6 Stunden gefastet haben. Die etwaige Einnahme von Pharmaka sollte wie folgt ausgesetzt werden:

• Antibiotika: 1 Monat
• Wismuth-Präparate: 1 Monat
• Protonenpumpen-Inhibitoren: 2 Wochen

Für den Helicobacter pylori –Atemtest stehen zwei unterschiedliche 13C-Harnstoff-Substrate zur Verfügung:

• Diabact UBT-Tabletten mit 50 mg 13C-Harnstoff
• INFAI 13C-Harnstoff-Pulver 75 mg

Je nach Substrat ergeben sich unterschiedliche Testabläufe:

	75 mg 13C Harnstoff Pulver	Diabact UBT Tablette
Einnahme	Pulver in 200 ml Orangensaft vollständig auflösen	Tablette unzerkaut mit Wasser einnehmen
Wartezeit bis zur Testdurchführung	30 Minuten	10 Minuten

Für die Untersuchung benötigen wir einen Doppelkammerbeutel. Vor Testbeginn die Beutel mit „basal“ und „10 Min.“ bzw. „30 Min.“ beschriften.

Patient atmet ein und bläst die Ausatemluft vollständig („bis es nicht mehr geht") in den Beutel. Den Beutel danach sofort wieder mit dem Schraubverschluss verschließen.

Anschließend wird eine Tablette Diabact UBT unzerkaut mit Leitungswasser bzw. das in Orangensaft gelöste ¹³C-Harnstoff Pulver eingenommen.

Nach 10 Minuten (Diabact) bzw.30 Minuten (¹³C Harnstoff-Pulver) wird wieder wie oben beschrieben in den entsprechend beschrifteten Beutel ausgeatmet.

Die Auswertung erfolgt durch Isotopen-Infrarot-Spektrometrie.

Achtung: Je nach eingesetztem Substrat ergeben sich unterschiedliche Referenzbereiche!

Ergebnis Diabact UBT	Bewertung
<1,3	negativ
1,3-1,7	grenzwertig
>1,7	positiv

 

Ergebnis INFAI	Bewertung
<1,5	negativ
1,5-4,0	grenzwertig
>4,0	positiv

Lactosetoleranz-Test

Prinzip des Tests

Die Lactase des distalen duodenalen Bürstensaums spaltet Lactose enzymatisch in die Monosaccharide Galactose und Glucose, die letztlich in das Blut resorbiert werden. Ist ausreichende Lactaseaktivität vorhanden, so kann man im Serum/Plasma nach oraler Verabreichung von Lactose einen Glucoseanstieg nachweisen. Liegt eine Lactasemangel vor, ist dieser vermindert oder gar nicht nachweisbar. Der Patient zeigt dann entsprechende Symptome wie Durchfall, Flatulenz und Bauchschmerzen.

Indikation

• Verdacht auf primären (angeboren, Mutation auf dem langen Arm des Chromosoms 2) oder sekundären Lactasemangel (z. B. nach Sprue, Morbus Whipple, Darminfektionen oder Morbus Crohn)
• Typische Symptomatik nach Genuss von Milch und Milchprodukten: Blähungen, Bauchkrämpfe, Durchfall

Kontraindikationen

Keine.

Durchführung

Serum sollte als Material für die Glucosebestimmung nur im Labor in Frage kommen, da dort eine schnelle Weiterverarbeitung möglich ist und der Glucoseabbau in der Probe nicht markant zum Tragen kommt.

Zeit	Gabe von	Blutentnahme
		Analyt	Material
0 min		Glucose	NaF-Plasma Serum
	50 g Lactose in 400 mL Wasser oder Tee bei Erwachsenen, bei Kindern ab dem 2. Lebensjahr 2 g Lactose pro kg Körpergewicht (also z. B. 40 g Lactose bei 20 kg Körpergewicht)
30 min		Glucose	NaF-Plasma Serum
60 min		Glucose	NaF-Plasma Serum
90 min		Glucose	NaF-Plasma Serum
120 min		Glucose	NaF-Plasma Serum

Bewertung

Ein Anstieg der Glucosekonzentration im stabilisierten NaF-Blut oder Serum > 20 mg/dL bzw. 1,11 mmol/L gilt als physiologisch, Anstiege darunter als pathologisch. Für Kapillarblut sind Glucoseanstiege > 25 mg/dL und 1,39 mmol/L physiologisch. Bauchkrämpfe, Blähungen und Durchfall können innerhalb von 8 Stunden nach Testbeginn bei Lactasemangel auftreten.

Bei positivem (pathologischen) Ausfall kann der molekularbiologische Nachweis der Mutation für den primären Lactasemangel angeschlossen werden.

Fehlerquellen

Der Patient muss nüchtern zum Test erscheinen. Es ist auf die exakte Lactosedosierung zu achten. Bei der Verwendung von Serum muss dieses so schnell wie möglich analysiert werden, da sonst falsch positive Testergebnisse auftreten können.

Literatur

Thomas, L.: Labor und Diagnose. TH-Books Verlagsgesellschaft. 5. Auflage 2005: 630 – 632

Sekretin-Test

Prinzip des Tests

Sekretin stimuliert die Gastrinsekretion der antralen G-Zellen. Beim Gastrinom findet man eine pathologisch erhöhte Stimulierbarkeit der Gastrinsekretion.

Indikation

• Differenzierung einer tumorbedingten Hypergastrinämie von anderen Ursachen wie atrophische Gastritis, perniziöse Anämie, Helicobacter pylori-Infektion, Protonenpumpenhemmer-Medikation, Magenkarzinom, Niereninsuffizienz, Kurzdarmsyndrom

Kontraindikationen

Akute Pankreatitis und der Schub einer chronischen Pankreatitis. Der Test darf bis 2 Wochen nach Abklingen der akuten Symptome nicht angewendet werden.

Nebenwirkungen

Hitzewallungen, Übelkeit, Bauchschmerzen, Schwindel, allergische Reaktionen, verminderte Sekretinwirkung bei Gabe von Estrogenen, Gestagenen, Opiaten und Anticholinergika

Durchführung

Ein Tag (24 h) vor Testbeginn müssen Antazida, Anticholinergika und H₂-Rezeptorantagonisten abgesetzt werden. Protonenpumpenblocker wie Omeprazol müssen mindestens 7 Tage vorher abgesetzt werden. Dem Test geht eine 12-stündige Nahrungskarenz voraus. Während des Tests bleibt der Patient nüchtern.

Zeit	Gabe von	Blutentnahme
		Analyt	Material
-15 min		Gastrin	Serum, gefroren
0 min		Gastrin	Serum, gefroren
	2 IU Sekretin pro kg Körpergewicht als Bolus innerhalb von 30 s intravenös
2 min		Gastrin	Serum, gefroren
5 min		Gastrin	Serum, gefroren
10 min		Gastrin	Serum, gefroren
15 min		Gastrin	Serum, gefroren
30 min		Gastrin	Serum, gefroren

Bewertung

Bei Vorliegen eines Gastrinoms kommt es nach 2 - 10 min zu einem Anstieg der Gastrin-Konzentration im Serum von > 200 ng/l (> 100 pmol/l). Bei etwas 10 % der Patienten bleibt der Test (falsch) negativ. Antrale G-Zell-Überfunktion, Antrumschleimhautreste nach Billroth-II-Operation und Zustand nach Vagotomie zeigen einen unauffälligen Sekretin-Test.

Fehlerquellen

• Verwendung von nicht geforenem Plasma
• Verwendung von nicht ausreichend gereinigtem Sekretin
• Aktivitätsverlust des Gastrins durch häufiges Auftauen und Einfrieren
• Hämolyse
• Testdurchführung am nicht nüchternen Patienten

Literatur

Lehnert, H.: Rationelle Diagnostik und Therapie in der Endokrinologie, Diabetologie und Stoffwechsel. Thieme,  3. Auflage 2010: 519
Partsch, C.-J. et al.: Endokrinologische Funktionsdiagnostik. Schmidt und Klaunig, 7. Auflage 2011: 75 - 76

D-Xylose-Test

Prinzip des Tests

D-Xylose ist eine Pentose, die in pflanzlicher Nahrung vorkommt. Sie wird zu 60 - 80 % unverändert in Duodenum und Jejunum resorbiert, wobei die höchsten Serumkonzentrationen 1 - 2 h nach oraler Gabe der Pentose erreicht werden. Etwa 60 % der resorbierten D-Xylose werden verstoffwechselt, 40 % hingegen, insbesondere in den ersten 5 h nach Gabe, werden unverändert renal eliminert. Die im 5 h-Urin nachweisbare D-Xylosekonzentration ist abhängig von der Resorptionskapazität des proximalen Dünndarms für Monosaccharide. Der Test prüft somit die funktionelle Integrität von Duodenum und Jejunum. Erkrankungen, die mit einer Einschränkung der resorptiven intestinalen Oberfläche des proximalen Dünndarms einhergehen, weisen eine pathologisch niedrige D-Xylose-Ausscheidung im Urin sowie eine erniedrigte D-Xylose-Konzentration im Serum auf.

Indikation

• Verdacht auf  Malabsorption, Resorptionsstörung für Monosaccharide in Duodenum und Jejunum

Kontraindikationen

Keine.

Durchführung

Der Test wird am nüchternen Patienten nach 12 h-Nahrungs- und Alkoholkarenz und nach vollständiger Blasenentleerung durchgeführt. Bei Kindern wird die Serumbestimmung bevorzugt, wobei hier der 1 h-Wert für den Test herangezogen wird. 

Zeit	Gabe von	Blutentnahme
		Analyt	Material
0 min		-	-
	25 g D-Xylose in 300 mL Wasser oder Tee bei Erwachsenen. Es werden 300 mL Wasser/Tee zur Sicherstellung einer ausreichenden Diurese nachgetrunken. Bei Kindern mit 4 - 30 kg Körpergewicht 5 g D-Xylose in 100 - 200 mL Wasser. Bei Kleinkindern unter 6 Monaten 15 D-Xylose/m² Körperoberfläche als 10 %ige Lösung
15 min		Xylose	Serum
60 min		Xylose	Serum
120 min		Xylose	Serum
5 h		Xylose	Sammelurin

Bewertung

Referenzbereiche:

Urin: > 4 g/5 h bzw. > 26,6 mmol/5 h
Serum, 15 min: > 100 mg/L bzw. 0,67 mmol/L
Serum, 1 h: > 300 mg/L bzw. 2,0 mmol/L
Serum, 2 h: > 300 mg/L bzw. 2,0 mmol/L

Kinder, 1 h-Wert: > 200 mg/L bzw. 1,33 mmol/L
Kleinkinder unter 6 Monate, 1 h-Wert: > 150 mg/L bzw. 1,0 mmol/L

 

Medizinische Bewertung
pathologischer Ausfall	normales Ergebnis
Sprue	Chronische Pankreatitis
Morbus Whipple	Ileitis terminalis (M. Crohn)
Resektion	Colitis ulcerosa
Amyloidose	Lactoseintoleranz
Verzögerte Magenentleerung
Bakterielle Überbesiedlung
Carcinoid
Zollinger-Ellison-Syndrom
Ascites, massive Ödem, Myxödem
Niereninsuffizienz

Fehlerquellen

Der Patient muss nüchtern zum Test erscheinen. Es ist auf eine exakte D-Xylosedosierung zu achten. Eine verminderte Xylose-Aussscheidung wird bei der Einnahme von Acetylsalicylsäure, Colchicin, Digoxin, Digitoxin, Neomycin und Opium-Alkaloiden gefunden. Als Störgrößen sind unvollständiges Urinsammeln, unvollständige Blasenentleerung am Ende der Sammelperiode, unzureichende Diurese bei Exsiccose, Erbrechen und Nahrungsaufnahme während der Testdurchführung zu beachten.

Literatur

Thomas, L.: Labor und Diagnose. TH-Books Verlagsgesellschaft. 8. Auflage 2012: 767 – 770
Gressner, A. und Arndt, T.: Lexikon der medizinischen Laboratoriumsdiagnostik. Springer, 2. Auflage 2013: 1430 - 1431